在Rameshwar等的研究中，采用轉染間充質干細胞的方法，使外泌體載有anti-miR-9。在進行間充質細胞和多形性成角質細胞瘤(GBM)細胞間anti-miR-9傳遞的實驗時，發現兩種細胞不僅可以通過縫隙連接介導的細胞間通訊(GJIC)也可以通過外泌體傳遞anti-miR-9。且anti-miR-9降低兩種GBM細胞(U87和T98G)對中流藥物替莫唑胺(TMZ)的抵抗能力的功能主要由外泌體傳遞的anti-miR-9實現，而非經GJIC傳遞的anti-miR-9，顯示出外泌體在運載miRNA進行基因zhiliao時的潛力。利用外泌體進行GBM的zhiliao不只停留在體外細胞實驗上，也已經有相關的體內zhiliao報道。外泌體中含有豐富的蛋白質和遺傳物質DNA以及RNA等。外泌體的工作原理

尺寸排除色譜法是使用聚合物凝膠或類似的固定相柱進行外泌體分離的技術,樣品以重力滴落的方式收集。流體力學半徑較小的樣品組分進入凝膠孔隙后,需耗費相對較長的時間通過凝膠柱,導致延遲洗脫,實現不同粒徑大小顆粒分離。尺寸排除色譜法可以與差速離心法結合而不會明顯損失外泌體,保證產量的同時可有效去除雜質蛋白,更適合目標蛋白質組學和miRNA的分析。靜水過濾透析法主要利用靜水壓力迫使樣品中不同特定大小分子先后通過透析管,其中溶劑和小溶質很容易通過透析管,而較大的顆粒,如外泌體和其他囊泡,仍留在透析管中而被收集。山東海洋生物外泌體外泌體給后續實驗產生了許多障礙。

瘤釋放的外泌體可以通過削弱免疫效應細胞的反應和激發免疫抑制細胞的擴增，來營造一個免疫抑制的環境。瘤釋放的外泌體可以替代瘤細胞接受免疫系統的攻擊，從而幫助瘤細胞逃過免疫系統的識別。瘤釋放的外泌體可以引發炎癥，利用基質浸潤細胞的反應營造出利于瘤生長的微環境。研究表明，在過去短短的5年里，對外泌體的研究已經取得了比較好的的進展。如今，收集并分析瘤釋放的外泌體已經成為液體活檢的一個重要研發方向。靶向瘤釋放外泌體的治理策略將對改善病癥患者的命運發揮出舉足輕重的影響。

外泌體作為藥物遞送載體較以往的合成系統具有多方面的優勢，比如：人工遞送載體具有更低的免疫原性，其含有的磷脂雙分子層可與靶細胞細胞膜融合，從而避廉價核巨噬細胞系統的吞噬作用。Srivastava等開發了一種基于外泌體-金奈米粒子（Exo-GNP）的藥物遞送系統—“nanosomes”用于肺病的醫治，研究表明該系統與單用多柔比星醫治相比，前者的多柔比星釋放量增加、攝取率提高、化療毒性降低且化療效果增強。此外，還有研究發現，使用外泌體運載紫杉醇（PTX）可顯著提高病細胞對PTX的吸收，將PTX加載至外泌體中顯著增加了藥物細胞毒性，Exo-PTX能顯著壓制肺病的發展。外泌體的檢測和提取還遇到一個困難即：對各種外泌體的分類。

在運輸DOX的研究中，Wei等選擇了已經在臨床上使用的未成熟的樹突細胞作為母代細胞，通過化學轉染使其分泌的外泌體表面含有Lamp2b，這種蛋白可以與αv整合蛋白特異性iRGD肽結合，使外泌體對DOX的運輸具有靶向性。將對iRGD肽靶向的外泌體和未經靶向性處理的外泌體用DiR染料標記，并分別靜脈注射入移植了人乳腺ai細胞的小鼠體內，觀察到靶向的外泌體在注射30min后已經出現在中流組織處，在注射2h后外泌體的含量高，而未經靶向性處理的外泌體在注射后主要集中在肝臟，幾乎很少到達中流組織處，說明對iRGD肽靶向的外泌體具有很好的靶向性。以前無法用超速離心法提取的微囊泡，也通過運用PS親和法實現高純度提取。成都外泌體攝取

外泌體與各種疾病的相關性被檢測出，特別是血液中釋放的病細胞來源的外泌體。外泌體的工作原理

外泌體(exosomes)是一類由細胞分泌到胞外的囊泡。與其他兩種胞外囊泡(微囊泡和凋亡小體)相比，外泌體在產生方式、尺寸、密度和內容物等方面存在明顯差異。不同于微囊泡“出芽”的形成方式，外泌體主要通過胞吐過程釋放至細胞外:首先細胞膜向內凹陷形成早期核內體(earlyendosomes)，早期核內體進一步內陷形成多泡體(multivesicularbodies，MVBs)，其中一部分多泡體與溶酶體(lysosome)融合，進而降解;另一部分與細胞膜融合，將其內部所包含的囊泡釋放至胞外，即為外泌體。外泌體具有獨特的物理化學性質，其直徑為30～200nm，密度為1.13～1.19g/mL，組成包括細胞來源相關的脂質、蛋白質、RNA、DNA等物質，在其表面連接有大量的糖鏈，如甘露糖、聚乳糖胺和α2，6-唾液酸等。外泌體的工作原理

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