免疫組化的結果分析：

免疫組化實驗通常需要設置陽性對照、陰性對照（或替代對照）（陽性對照是排除方法和實驗系統有無問題；陰性對照與替代對照是排除有無非特異性染色）。一般情況下，陽性對照顏色的特點為：Ag定位，包漿、胞核、胞膜、間質具有結構性。且染色的強度不同（顏色深淺不一）；陰性對照的特點為：染色細胞與組織無區別，顏色具有彌散性，分布均勻。

英瀚斯生物可承接各類病理染色，包括免疫組化。

說明：免疫組化實驗可以對結果進行定量分析，但要實驗得到的必須是高質量的染色切片，要求背景染色淺且特異性染色較深，這樣分析的結果才會比較準確。 免疫組化的樣本保存要求是什么？湖北大鼠免疫組化價格

免疫組化結果要如何分析？

 （1）陽性著色細胞計數法。在40*光鏡下，隨機選擇不重疊的10個視野，機器或人工計數陽性著色細胞，每組3~6張不同動物組織切片，然后進行組間比較即可。

（2）灰密度分析法。可以通過在不同組別和不同動物組織切片上選擇相同區域、相同條件下用image j進行灰密度分析，然后進行統計分析即可。

（3）評分法。用光學顯微鏡下對組織切片分別按染色程度（0~3分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色）、陽性范圍進行評分（1~4分為0~25%、26~50%、51~75%、76~100%），**終可以分數相加，再進行比較。對于以上這幾種方法，各有利弊，請細心選擇。要想得到正確結果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質量切片。

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確定cancer分期，免疫組化技術應用于臨床可以進行處理哦，英瀚斯生物為您處理。cancer分期是判斷預后的一個指標，與是否浸潤、有無淋巴管或血管侵襲密切相關，而通過免疫組化方法可以判斷cancer是否浸潤、有無淋巴管或血管侵襲。層黏連蛋白和Ⅳ型膠原的單克隆抗體可以清楚的顯示基膜的主要成分，用于區分原位*和浸潤*，一旦上皮性*突破基膜為浸潤，未突破基膜為原位;顯示血管和淋巴管內皮細胞的標記物第八因子相關蛋白、D2-40等則可清楚顯示cancer對血管或淋巴管的浸潤。因此對許多cancer的良惡性鑒別及有無血管或淋巴管浸潤，免疫組化結果作為主要的鑒別依據。

做免疫組化時如何選擇一抗？

1、單克隆和多克隆抗體的選擇。由一種克隆產生的特異性抗體叫做單克隆抗體。單克隆抗體能目標明確地與單一的特異抗原決定簇結合，就像導彈精確地命中目標一樣。另一方面，即使是同一個抗原決定簇，在機體內也可以由好幾種克隆來產生抗體，形成好幾種單克隆抗體混雜物，稱為多克隆抗體。在抗原抗體反應中，一般單克隆抗體特異性強，但親和力相對小，檢測抗原靈敏度相對就低；而多克隆抗體特異性稍弱，但抗體的親和力強，靈敏度高，但易出現非特異性染色（可以通過封閉等避免）。

2、應用范圍的選擇。有的一抗只能用于Westernblotting，或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等；甚至標明石蠟切片或冰凍切片。

3、種屬反應性的選擇（speciesreactivity）。這一點很重要，表明這種抗體可能存在種屬差別，且這種抗體適合檢測哪種種屬動物體內的抗原。

4、種屬來源，一般兔來源的多是多克隆抗體；而小鼠來源的多是單克隆抗體，但也有另外。根據此來源來選擇相應的二抗。

5、生產廠家的選擇。

關于免疫組化的常見問題匯總。

免疫組化的抗原修復技術

抗原修復是免疫組化實驗中的重要步驟，目的是暴露被固定過程掩蓋的抗原表位。常用的抗原修復方法有熱修復和酶消化。免疫組化熱修復是通過加熱（如微波或高壓）使蛋白質變性，暴露抗原表位。常用的緩沖液有檸檬酸鹽緩沖液和EDTA緩沖液。酶消化是通過蛋白酶（如胰蛋白酶）消化部分蛋白質，暴露抗原表位。免疫組化實驗中不同的抗原修復方法適用于不同的抗原和抗體，需要根據免疫組化具體實驗條件進行優化調整。 免疫組化失敗的原因？黑龍江小鼠免疫組化推薦

免疫組化怎么做？步驟方法？湖北大鼠免疫組化價格

免疫組化的局限性。靈敏度高、精確性和特異性是一種理想的cancer標記物必須具有的，但至今所發現的cancer標記物還沒有能完全滿足這些標準。某些正常細胞也分泌一些cancer標記物，因此cancer細胞學并不是單獨產生一種標記物，即選用一組抗體比單一抗體更有利。在cancer診斷中評估免疫組化的局限性主要在抗體特異性和解釋方面。在免疫組化操作中都必須有適當的陽性與陰性對照，作為技術完整性質量控制，如對照組被忽略或不理想時，免疫組化染色的結果要謹慎對待，免疫組化的正確結果不僅要依靠技術步驟上規范化操作，而且有賴于正確的解釋，在報告免疫組化染色結果時不應孤立地解釋，應考慮到診斷與鑒別診斷、所應用的抗體特性、所研究組織性質，同時還要注意假陽性與假陰性結果的干擾。湖北大鼠免疫組化價格